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          IPS細胞怎么誘導分化?

          發(fā)布時間: 2022-01-04  點擊次數(shù): 2953次

          IPSC生成通常是實現(xiàn)真正的實驗目標的中間步驟。

          它一般應用于:

          人胚胎發(fā)育建模;

          作為難以分離的細胞來源,用于基礎研究和疾病建模;

          藥物篩選應用;

          細胞替代治療。


          IPS神經(jīng)分化的protocol,以下是神經(jīng)細胞的分化操作步驟,可供參考:

          準備好神經(jīng)誘導分化的培養(yǎng)基,建議使用Essential 8TM培養(yǎng)基以Matrigel基質(zhì)膠作為基質(zhì),或者使用StemPro hESC SFM培養(yǎng)基以Geltrex作為基質(zhì)。


          1、高品質(zhì)的PSCs(無分化或者僅含少量分化的克隆)是進行有效的神經(jīng)誘導的關(guān)鍵。在傳代PSCs時去除所有的或者大部分分化的克隆。分化的克隆可以通過使用Nikon顯微標志和Nikon顯微C-OA 15mm目標適配器被標記


          2、當PSCs達到~70-80%融合時,根據(jù)PSC分種實驗方法將PSC接種到6孔板中在分種PSC團塊前,確定分種的密度,方法如下:


          3、當準備好PSC細胞懸液后,取部分細胞到15-ml錐形管中來估算PSC細胞懸液的總細胞量(如,將6孔板的一個孔中的細胞制備成6ml PSC細胞懸液,鄧1ml來進行細胞數(shù)估算)。


          4、將裝有細胞的15-ml錐形管以200×g離心3分鐘,棄上清。


          5、加入1ml預熱的StemPro Accutase細胞消化液,37度孵育5分鐘。


          6、用1ml的移液管上下猛烈的吹吸5次,將細胞分散成單個細胞懸液。


          7、選擇你常用的方法計數(shù)總細胞數(shù)。如果在1ml Accutase細胞消化液中的總細胞數(shù)為1×10^6,那么剩下的5ml PSC細胞懸液中的總細胞數(shù)為1×10^6×5=5×10^6


          8、加入2.5ml PSC培養(yǎng)基至包被好的6孔板的每個孔中。


          9、溫和的混勻有PSC細胞懸液的錐形管,將PSCs以2.5×10^6-3×10^5的數(shù)量接種到每個孔中。例如,如果PSC懸液為1×10^6個細胞/ml,將0.25-0.3ml PSC懸液加入到每個孔中。


          10、快速的前后左右晃動培養(yǎng)皿,將細胞分散到整個表面,于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。


          以下點需要注意:

          1、分種 的比例根據(jù)在分種前PSCs的融合程度用PSC細胞系類型的不同而有所差異。在分種后的第一天即開始進行神經(jīng)誘導(大約傳代后24小時)。在傳代PSCs時,PSCs的起始密度應該在15-25%的融合細胞需要以團塊狀接種,避免成為單個細胞。單個細胞接種PSC易增加細胞的死亡。

          2、在分種的時候可以將10um ROCK抑制劑加入到PSC培養(yǎng)基中處理過夜,以防止細胞的死亡。

          3、如果起始用的PCS狀態(tài)很差,非神經(jīng)樣的克隆將會在培養(yǎng)中出現(xiàn)。在這種情況下,可以有兩種操作選擇:

          a、如果僅在培養(yǎng)皿的極少區(qū)域出現(xiàn)該細胞形態(tài),在挑除非神經(jīng)樣分化的克隆后可以繼續(xù)培養(yǎng)。為了去除非神經(jīng)樣分化的克隆,先用顯微標記出所有非神經(jīng)樣分化的克隆。傾斜培養(yǎng)皿,用巴氏玻璃吸管將標記的克隆吸掉去除。將培養(yǎng)皿旋轉(zhuǎn)180度,重復以上步驟。操作每個孔時均重復以上步驟,以避免細胞缺少培養(yǎng)基而需經(jīng)受無培養(yǎng)基壓力。

          b、如果出現(xiàn)了大量的非神經(jīng)樣的克隆,建議放棄繼續(xù)培養(yǎng),而選擇高品質(zhì)的PSCs重頭開始。

          c、更換培養(yǎng)基一定要注意,請預熱*培養(yǎng)基,冰冷的培養(yǎng)基加入會導致細胞皺縮和漂浮。



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